盧敏1,2 白杰1 魏鳳仙1 徐彬1 尹清強2 李紹鈺[1]*
(1. 河南省農(nóng)業(yè)科學院畜牧獸醫(yī)研究所,鄭州 450002;2. 河南農(nóng)業(yè)大學牧醫(yī)工程學院,鄭州 450002)
摘 要:為了實現(xiàn)原核表達的途徑高效獲取抗菌肽蛋白,以RT-PCR的方法反轉(zhuǎn)錄合成家蠅的抗菌肽diptericin基因,并克隆至pGEX-4T-1載體上,轉(zhuǎn)化至大腸桿菌BL21宿主菌進行表達。測序結(jié)果顯示RT-PCR克隆到長345 bp的家蠅diptericin基因,重組菌經(jīng)異丙基-ß-D-硫代半乳糖苷(IPTG)誘導后,通過SDS-PAGE電泳和Western-blot檢測到目的蛋白的融合表達,結(jié)果表明帶有GST標簽的融合蛋白大小約為37 KDa,并且通過GST純化柱純化得到了目的蛋白。
關(guān)鍵詞:家蠅;抗菌肽;diptericin;原核表達
Expression of Diptericin Gene from Housefly(Musca Domestica) in E. coli
Lu Min1,2 Bai Jie1 Wei Fengxian1 Xu Bin1 Yin Qingqiang2 Li Shaoyu1*
(1. Institute of Animal Husbandry and Veterinary Science, Henan Academy of Agricultural Sciences, Zhengzhou 450002; 2. College of Animal Science and Veterinary Medicine, Henan Agricultural University, Zhengzhou 450002)
Abstract: To expression antibacterial peptide by prokaryotic expression, diptericin gene was obtained by RT-PCR method from housefly. Then, diptericin gene was cloned to PGEX-4T-1 expression vector and transformed into E. coli BL21 for protein expression. Sequencing result showed that housefly diptericin gene was 345 nucleotides in length, recombinant PGEX-4T-1 was induced by IPTG and the expression of diptericin fusion protein was detected by SDS-PAGE electrophoresis and Western-blot. Result showed that diptericin fusion protein with GST label was about 37 KDa. And the diptericin fusion protein has been purified by GST protein purification column.
Keywords: housefly; antibacterial peptide; diptericin; prokaryotic expression
抗菌肽(Antibacterial peptide)是生物體內(nèi)具有免疫屏障作用的一類多肽,是天然免疫系統(tǒng)中不可缺少的重要組成部分[1]。自20世紀70年代末Boman等首次在惜古天蠶(Hyalopbora cecropia)中發(fā)現(xiàn)抗菌肽天蠶素(cecropin)以來,迄今已有1000多種具有抗菌活性的多肽被分離鑒定[2],且來源于昆蟲的抗菌肽就有200多種。由于抗菌肽一般都具有抗細菌的活性,有的還具有抗病毒、抗原蟲及抑制和殺傷腫瘤細胞等活性,并且具有熱穩(wěn)定性好、對正常細胞沒有損害、不易產(chǎn)生耐藥性等特點,所以成為人們關(guān)注的熱點。
家蠅能夠在惡劣的環(huán)境中生存,在其長期抵御微生物的侵襲中形成了其獨特的免疫系統(tǒng),對于家蠅抗菌肽的研究越來越多,其中研究較詳細的有attacin、defensin、cecropin,而對雙翅肽diptericin的研究較少。從昆蟲體內(nèi)提取天然抗菌肽的得率少,生產(chǎn)成本高,因此,構(gòu)建基因工程菌來實現(xiàn)抗菌肽的高效表達成為人們研究的熱點。本研究從家蠅幼蟲體內(nèi)克隆得到diptericin基因,與PGEX-4T-1載體連接后,在大腸桿菌BL21中得到表達,為后續(xù)篩選可以高效表達diptericin蛋白的基因工程菌提供基礎。
1 材料與方法
1.1 實驗菌株和試劑
家蠅 Musca domestica 種蠅由河南省疾病預防控制中心惠贈,幼蟲由本實驗室飼養(yǎng),飼養(yǎng)溫度25℃,相對濕度50 % ~ 70 %;大腸桿菌DH5α、BL21購自天根生物生化科技有限公司,克隆質(zhì)粒PMD19-T購自寶生物工程有限公司;大腸桿菌ATCC-25922和表達質(zhì)粒PGEX-4T-1由本實驗室保存。
GSTrap HP,1 ml 購自GE Healthcare Life Sciences,RNAiso Plus、M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶、Taq DNA聚合酶、T4 DNA Ligase、蛋白質(zhì)分子量標準、限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ、XhoⅠ和DNA Marker為TaKaRa公司產(chǎn)品,質(zhì)粒提取和DNA純化回收試劑盒購自天根生物科技有限公司,其它試劑為國產(chǎn)和進口分析純。PCR引物合成及DNA序列測定由上海生物工程技術(shù)服務有限公司完成。
1.2方法
1.2.1 家蠅幼蟲總RNA的提取 微生物刺激家蠅:培養(yǎng)大腸桿菌ATCC-25922至OD 600=0.6~0.8,離心收集菌體,用生理鹽水洗滌兩次后重懸,最終OD 600=1.8~2.0。選取大小均一、活動能力強的家蠅3日齡幼蟲,用帶有大腸桿菌的針刺破家蠅幼蟲后三分之一,飼養(yǎng)6 h后收集幼蟲于液氮保存???/SPAN>RNA提?。簩⒂紫x于液氮研磨后,加入RNAiso Plus,提取總RNA(具體步驟按照RNAiso Plus試劑盒說明書),用1 %瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA的完整性,并測定RNA濃度及純度。
1.2.2 RT-PCR克隆家蠅抗菌肽diptericin基因 從GeneBank中查到家蠅diptericin基因mRNA序列(Genebank ID:FJ795370.1),在其編碼區(qū)設計引物,上游引物引入EcoRⅠ酶切位點,下游引物引入XhoⅠ酶切位點,并加入27堿基的HA標簽序列。
P1:5'-TTAGAATTCAACAAAATGAAATATCTCTGGGCCATTGTTC-3'
P2: 5'-TATCTCGAGTCAAGCGTAGTCTGGGACGTCGTATGGGTACCATCTGTAGGTATAA C-3'
以提取的總RNA為模板,用隨機引物進行反轉(zhuǎn)錄合成cDNA第一鏈,反轉(zhuǎn)錄過程嚴格參照M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶1st-strand cDNA合成的操作方法。以cDNA為模板,P1、P2為引物,擴增家蠅diptericin基因。PCR產(chǎn)物經(jīng)純化回收后,在T4 DNA連接酶作用下與PMD19-T載體連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,利用藍白斑篩選方法篩選陽性克隆,具體方法參照《分子克隆實驗指南》[3]第15章。挑選陽性克隆進行菌落PCR鑒定、EcoRⅠ和XhoⅠ雙酶切鑒定,鑒定后的陽性克隆送至上海生工生物技術(shù)有限公司測序。
1.2.3 PGEX-4T-1-diptericin重組表達質(zhì)粒的構(gòu)建 將重組克隆PMD19-T-diptericin質(zhì)粒和表達載體質(zhì)粒PGEX-4T-1同時進行EcoRⅠ和XhoⅠ雙酶切,并純化回收diptericin基因和PGEX-4T-1質(zhì)粒,回收產(chǎn)物經(jīng)T4 -DNA連接酶連接后,轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21,利用轉(zhuǎn)化子的AMP抗性在LB平板上進行篩選,陽性克隆進行質(zhì)粒PCR鑒定及雙酶切鑒定,并進行測序,確定有正確的閱讀框,無堿基突變后進行下步實驗。
1.2.4 diptericin基因的融合表達 從平板上挑取PGEX-4T-1-diptericin-BL21的單克隆菌落,接種于3 ml含有AMP的LB培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)過夜,第二天按照1:100接種于100 ml LB培養(yǎng)基中,培養(yǎng)至OD 600=0.6~0.8,加入終濃度為1 mmol/L的IPTG誘導4 h。離心收集菌體,在冰上進行超聲破碎,條件:300 w,超聲4 s,間隔4 s,10分鐘。破碎之后離心收集上清液。將上清液與等體積的2×SDS上樣緩沖液混合,沸水浴3~5 min,取8 μL進行SDS-PAGE電泳檢測,以轉(zhuǎn)化有空質(zhì)粒PGEX-4T-1的大腸桿菌BL21為對照。SDS-PAGE蛋白電泳參照《分子克隆實驗指南》第5章,蛋白質(zhì)用考馬斯亮藍R-250染色,使用的分離膠濃度為12 %。
1.2.5 Western-blot檢測 目的蛋白中引入了HA標簽,用此標簽進行Western-blot檢測目的蛋白,一抗:小鼠源 Anti-HA antibody,二抗:熒光素標記羊抗鼠IgG。經(jīng)過SDS-PAGE電泳后,去除濃縮膠,照分離膠尺寸剪好濾紙和硝酸纖維素膜(NC膜),并將其與電轉(zhuǎn)移裝置配套的海綿墊置于轉(zhuǎn)移緩沖液平衡10 min。安裝好電轉(zhuǎn)移裝置后,冰浴條件下3 W轉(zhuǎn)移1 h 50 min。將NC膜用封閉液封閉2h,一抗在室溫下孵育1~2 h,二抗室溫孵育1 h,用Odessey熒光WB檢測系統(tǒng)掃描圖片。
1.2.6 diptericin-GST融合蛋白的純化 將重組PGEX-4T-1-diptericin-BL21大腸桿菌誘導表達后,離心取菌體沉淀進行超聲破碎,取上清液用0.45 μm的過濾器進行過濾。按照GSTrap HP 1 ml純化柱操作方法進行純化,并進行SDS-PAGE電泳檢測。
2 結(jié)果
2.1 家蠅幼蟲總RNA的提取與RT-PCR擴增diptericin基因
本試驗用RNAiso Plus試劑提取家蠅幼蟲總RNA,經(jīng)電泳檢測條帶清晰完整性好,OD260/OD280在1.8~2.0之間純度好,這為后續(xù)試驗順利進行奠定了基礎。RT-PCR擴增diptericin基因,從電泳結(jié)果可以看出,擴增產(chǎn)物大小在350bp左右,與預計的結(jié)果相符,見圖1。
1 2 3 4 M 600 450 300 150 bp 1200 900 750
圖1 RT-PCR擴增diptericin基因
Fig.1 RT- PCR products of diptericin gene
注:M, DNA Marker; 1~4, diptericin 基因
2.2 重組菌PGEX-4T-1-diptericin-BL21的鑒定
提取陽性克隆質(zhì)粒,進行EcoRⅠ和XhoⅠ雙酶切,出現(xiàn)了大小約為4.9 kb和350 bp的兩條帶,表明重組質(zhì)粒PGEX-4T-1-diptericin構(gòu)建成功,見圖2。將通過鑒定的質(zhì)粒送至上海生物技術(shù)服務有限公司測序,分析測序結(jié)果,選取插入方向正確,具有正確的閱讀框,無堿基突變的重組菌。測序結(jié)果顯示,含有酶切位點及HA標簽序列的diptericin基因長為345 bp,diptericin基因與Genbank中已公布diptericin序列的同源性最高達到99.9 %,對其編碼蛋白進行分析,diptericin基因編碼99個氨基酸,分子量約為10.796 kDa。
M 1 2
bp 600- 450- 300- 150-
圖2 重組質(zhì)粒PGEX-4T-1-diptericin雙酶切鑒定
Fig. 2 The double digestion results of PGEX-4T-1-diptericin
注:M, DNA Marker;1、2, 重組質(zhì)粒PGEX-4T-1-diptericin雙酶切
2.3 家蠅diptericin融合蛋白誘導表達及檢測
挑選重組PGEX-4T-1-diptericin-BL21的單菌落進行誘導表達,細胞破碎后提取上清,經(jīng)過SDS-PAGE電泳,同時將大腸桿菌BL21和含有空質(zhì)粒的大腸桿菌PGEX-4T-1-BL21作為對照,電泳結(jié)果如圖3所示,目的蛋白為帶有GST標簽的diptericin蛋白,大約在37 KDa,與理論大小相符,而對照組此位置均無條帶,PGEX-4T-1-BL21經(jīng)誘導后在大小約為26 KDa處有明顯條帶,應為GST標簽蛋白條帶。
KDa 97.2 66.4 44.3 29.0 20.1 1 2 3 4 5 M 目的條帶
Fig.3 The SDS-PAGE of diptericin gene expression product
注:M, 蛋白分子質(zhì)量標準; 1, 大腸桿菌BL21; 2, 大腸桿菌PGEX-4T-1-BL21; 3, 大腸桿菌PGEX-4T-1-BL21誘導上清; 4, PGEX-4T-1-diptericin-BL21未誘導上清; 5, PGEX-4T-1-BL21誘導表達破碎上清
2.4 Western-blot檢測
從圖4可以看出,通過HA抗體進行Western-blot檢測,PGEX-4T-1-diptericin-BL21誘導后有單一條帶的目的蛋白,而對照組PGEX-4T-1-BL21無條帶,表明diptericin基因成功在大腸桿菌BL21中得到了表達。
75KDa 63KDa 48KDa 35KDa 25KDa 20KDa M 1 2
Fig.4 The western-blot of diptericin
注:M, 蛋白分子質(zhì)量標準; 1, 大腸桿菌PGEX-4T-1-BL21; 2, PGEX-4T-1-diptericin-BL21
2.5重組蛋白純化
收集PGEX-4T-1-diptericin-BL21誘導表達后的菌體超聲破碎上清,通過GSTrap HP 1 ml純化柱純化目的蛋白,將洗脫緩沖液洗脫后的樣品進行SDS-PAGE電泳檢測,見圖5,可以看到,通過GST純化柱純化到了目的蛋白,顯示為單一條帶,大小約37 KDa。
M 1 2 97.2 KDa 66.4 KDa 44.3 KDa 29.0 KDa
圖5 重組diptericin蛋白的純化
Fig.5 Purification of diptericin
注:M, 蛋白分子質(zhì)量標準; 1-2, diptericin-GST融合蛋白純化
3 討論
已有許多學者對構(gòu)建基因工程菌來生產(chǎn)抗菌肽進行了研究,包括原核表達和真核表達,如Liang等[4]利用將家蠅Cecropin基因克隆到PGEX-4T-1載體上,實現(xiàn)了其在大腸桿菌中的融合表達,切除GST標簽后的Cecropin蛋白對大腸桿菌具有一定的抑菌效果,李小波[5]等將家蠅抗菌肽attacin克隆至酵母表達載體pPIC9K中,實現(xiàn)其在畢赤酵母GS115中的表達。雙翅肽(diptericin)最早由Dimarcq等[6]從經(jīng)細菌誘導的新陸原伏蠅Phormia terranovae 幼蟲的血淋巴中分離得到,并證實其參與昆蟲的體液免疫防御且發(fā)揮著十分重要作用。然而,對于家蠅diptericin基因的研究并不多。
抗菌肽對蛋白酶非常敏感,而且表達抗菌肽對宿主菌可能具有毒性或者表達的抗菌肽無活性[7],以融合蛋白的形式表達抗菌肽目的基因,可以減少抗菌肽本身對宿主菌的毒害作用,同時還能保護抗菌肽蛋白避免蛋白酶的降解[8]。PGEX-4T-1是目前較多使用的表達載體,它利用谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶基因和目的基因連接,能夠在大腸桿菌中產(chǎn)生GST融合蛋白,并且可以用凝血酶進行切割GST蛋白而獲得目的基因產(chǎn)物。徐建華[9]等將家蠅Attacin基因分別克隆至原核表達載體pET30a(+)和pGEX-4T-1,轉(zhuǎn)化大腸埃希菌,從pET30a(+)/Attacin重組質(zhì)粒的表達宿主菌中未能獲得His-Attacin融合蛋白,而從pGEX-4T-1/Attacin重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化菌種獲得了GST-Attacin融合蛋白。舒梅[10]等將水生動物抗菌肽Y18和CEC1分別克隆到pGEX-4T-1載體上,構(gòu)建了pGEX-Y18和pGEX-CEC1兩個融合蛋白表達載體,獲得了抗菌肽Y18和CEC1,并發(fā)現(xiàn)融合蛋白GST-Y18和GST-CEC1、抗菌肽Y18和CEC1都能有效地抑制E.coli DH5α、S. aureus、B. subtilis和S. cerevisiae的生長。
因此,本研究將家蠅diptericin基因克隆至PGEX-4T-1載體中,對重組大腸桿菌進行IPTG誘導,通過SDS-PAGE蛋白電泳檢測到大小約為37 KDa的目的蛋白,western-blot也檢測到單一蛋白條帶,說明diptericin基因在大腸桿菌中進行了融合表達。經(jīng)過純化,得到了含有GST標簽的diptericin融合蛋白,以融合蛋白形式表達的diptericin蛋白對宿主菌沒有明顯的抑制生長作用,后續(xù)試驗將通過切除GST標簽來檢測diptericin蛋白的生物活性,并通過研究不同誘導時間、溫度等條件來改善目的基因的表達,以期篩選到可以高效表達diptericin蛋白的重組基因工程菌。
抗菌肽有不同的種類,通過將不同的抗菌肽串聯(lián)進行表達有望得到活性更高的雜合抗菌肽,如陳玉海[11]等將非洲爪蟾皮膚分泌的兩種種抗菌肽magaininⅡ和PGLa在畢赤酵母中進行雜合表達,構(gòu)建了雜合抗菌肽magaininⅡ-PGLa的分泌型畢赤酵母表達載體,實現(xiàn)了雜合抗菌肽在畢赤酵母中的分泌表達。因此,今后可將不同的家蠅抗菌肽基因進行串聯(lián)表達,獲得抗菌譜更廣,活性更好的基因工程抗菌肽蛋白。
4 結(jié)論
本研究成功構(gòu)建了家蠅diptericin基因原核表達載體PGEX-4T-1-diptericin-BL21,在大腸桿菌BL21中獲得了該蛋白的可溶性表達,經(jīng)過GST標簽純化柱純化得到了diptericin蛋白,為高效表達該蛋白提供了前期基礎。
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[1]收稿日期:2015-8-20
基金項目:河南省科技攻關(guān)項目(142102110069);國家現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系項目(CARS - 42)
作者簡介:盧敏,女,博士研究生,研究方向:動物營養(yǎng)與飼料科學;E-mail: 453808792@qq.com
*通訊作者:李紹鈺,男,研究員,研究方向:動物營養(yǎng)調(diào)控與飼料高效利用;E-mail: lsy9617@aliyun.com